STERILIZATION OF SUGAR BEET PLANT MATERIAL, DEPENDING ON THE TYPE OF STERILIZER, CONCENTRATION AND EXPOSURE OF STERILIZATION IN VITRO

Authors

  • V. V. Polishchuk Uman National University of Horticulture
  • L. M. Karpuk Bila Tserkva National Agrarian University
  • I. M. Pushka Uman National University of Horticulture
  • O. P. Serzhuk Uman National University of Horticulture
  • T. V. Polishchuk Institute of Bioenergy Crops and Sugar Beet NAAS of Ukraine

Keywords:

explants, sugar beet, culture in vitro, sterilization, concentration, exposure of sterilization, plants-regenerates

Abstract

The thesis being presented are results of researches regarding the selection of sterilizer, exposure of sterilization and its concentration in sugar beet hybrids when injected into the culture in vitro.The most effective sterilizing agent to enter micro engraftments in isolated culture is defined 0.1% matched aqueous solution of dichloride mercury exposure for 15 minutes is established.The exit o f sterile viable explants from which soon evolved the plants-regenerates is amounted up to 96%.It should be noted that the best sterilizer was the five percent solution of Septodor-forte, for which the increasing of exposure the sterilization from 10 to 20 minutes is obtained the exit o f sterile material at 50-90% level.

References

Мусієнко М.М. Біотехнологія рослин: навч. посіб. [для студ. вищ. навч. закл.] I М.М. Мусієнко, О.О. Панюта. — К.: ВПЦ Київський університет, 2005. — 114 с.

Kyte L. Plants from test tubes: an introduction to micropropagation I LydianeKyte, John G. Kleyn. — Portland: Timber Press, 1996. — 240 p.

Krens F.A. The role of explant source and culture conditions on callus induction and shoot regeneration in sugar beet (Beta vulgaris L.) I F.A.Krens, D. Jamar II Journal of Plant Physiology — 1989. — Vol. 134, № 6. — P. 651-655.

Фоменко Н.Р. Эффективность влияния дезинфицирующих препаратов на семена сахарной свеклы при введении в культуру in vitro / Н.Р. Фоменко // Достижения молодых ученых — будущее в развитии АПК: Матер. межрегиональной научно-практической конф. молодых ученых. — Воронеж: ФГОУВ- ПОВГАУ, 2007. — Ч. 1. — С. 287-290.

Мишуткина Я.В. Создание трансгенных растений сахарной свеклы, экспрессирующих ген bar / Я.В. Мишуткина, А.М. Камионская, К.Г. Скрябин // Прикладная биохимия и микробиология. — 2010. — Т. 46, № 1. — С. 89-95.

Gamborg O.L. Culture methods and detection of glucanases in suspension cultures of wheat and barley / O.L.Gamborg, D.E. Eveleigh // Canadian journal of biochemistry. — 1968. — Vol. 46 № 5. — P. 417-421. 7.Патент на корисну модель № 75967. Спосіб прискореного розмноження стійких до цвітушності ЧС-форм цукрових буряків з використанням технологій in vitro// Заявка № u 2012 04341 подана 29.07.2011; зареєстрована у Державному реєстрі патентів України на корисні моделі 06.04.2012 / В.В. Поліщук, В.А. Доронін, А.О. Яценко, А.І. Опалко, Д.М. Адаменко, М.М. Ненька, О.В. Ненька, В.М. Майборода, І.В. Ковальчук, Л.М. Карпук — 2012. — Бюл. № 24. — 4 с.

Поліщук В.В. Удосконалення методів мікроклонального розмноження кукурудзи / В.В. Поліщук, І.В. Ковальчук, Д.М. Адаменко та ін. // Зб. наук. праць Уманського НУС. — Вип. 75. — 2011. — С. 139-149.

Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений invitro и биотехнологии на их основе: Учеб.пособие / Р.Г. Бутенко. — М.: ФБК-Пресс, 1999. — 160 с.

Бутенко Р.Г. Культуры изолированных тканей и физиология морфогенеза растений / Р.Г. Бутенко. — М.: Наука, 1964. — 272 с.

Published

2023-05-03